产品简介：

病理学中，糖原染色是常规的染色方法之一。在1946年，McManus最先利用高碘酸-雪夫技术来显示黏蛋白，该染色液不仅能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，还能够显示糖原，以及霉菌、软骨、垂体、色素、真菌、淀粉样物质、基底膜等，因此该法常用来显示糖原和其他多糖，

过碘酸又被称高碘酸，是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，并且醛可以结合Schiff试剂形成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，在实验过程中应注意选择适宜的高碘酸浓度并控制好氧化时间，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于过氧化的时间范围内，对于整个方法而言这是很关键的步骤。

本糖原PAS染色液的特点是采用Solarbio特有配方技术，不但大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；最为关键的是操作简捷，仅需1h左右。

 有效期：6 个月有效。

自备材料：

1、10%的福尔马林固定液

2、蒸馏水

3、乙醇

操作步骤（仅供参考））：

1、实验过程中，常规固定，常采用 10%的福尔马林，常规脱水包埋。

2、冰冻切片直接入蒸馏水；石蜡切片脱蜡入蒸馏水。

3、自来水冲洗2～3min，再用蒸馏水充分浸洗2次。

4、放入过碘酸溶液中，室温放置5～8min，一般时间控制在10min以内。

5、自来水冲洗1次后蒸馏水浸洗2次。

6、将上述样本放入SchiffReagent，置于室温阴暗处，浸染10～20min。

7、蒸馏水轻柔冲洗10min。

8、样本放入苏木素染色液中，染细胞核1～2min。

9、在酸性乙醇分化液中分化2～5s。

10、蒸馏水冲洗10～15min后，更换双蒸水清洗，使其返蓝。

11、逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。

染色结果：

备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和 SchiffReagent 中作用时间的长短。

阴性对照(可选)：

1、对照切片可以使用用唾液，处理取唾液片（过滤后用）30～60min后，与其他切片共同放入过碘酸溶液。结果应呈现为阴性。

2、可以取淀粉酶为对照，取淀粉酶1g于双蒸水或PBS(pH5.3)100ml，处理30～60min后，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。

3、如果对照片采用其自身样本，对照片可以不经过碘酸溶液这一步，直接入SchiffReagent。染色结果：对照片呈阴性反应，无紫红色颗粒。

注意事项：

1、切片脱蜡应尽量处理干净，否则影响染色效果。

2、氧化时的温度以 18～22℃最佳且过碘酸氧化时间不宜过久。

3、过碘酸溶液和SchiffReagent应4℃密闭保存，实验进行过程中避免接触过多的阳光和空气。实验准备时可以提前30min将其取出在室温恢复后，避光暗处使用。

4、酸性乙醇分化液需要经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性乙醇分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

5、作用时间在过碘酸溶液和SchiffReagent中非常重要，该情况可根据切片厚薄、组织的类别等具体实验情况决定。

6、本染色液常用于常规组织切片染色，对于真菌、细胞、极其薄的切片，因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低，不宜过染，建议采购糖原PAS染色试剂盒（细胞真菌专用）。

7、冷冻切片染色尽量在短时间内完成。

8、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

9、本产品仅供科研使用，严禁它用。